ČESKÁ UROLOGIE / CZECH UROLOGY – 4 / 2017
291 Ces Urol 2017; 21(4): 289–298 ORIGINÁLNÍ PRÁCE v klinické diagnostice? A mají přínos pro klinic- kou praxi? V tomto článku se zaměříme na analýzu kvality ejakulátu pomocí průtokové cytometrie. Základním cytometrickým vyšetřením je stanovení koncen trace spermií a přítomnosti leukocytů v ejakulátu. Pomocí specifického značení spermií je možné zjistit zastoupení živých a apoptotických spermií v ejakulátu, ověřit integritu akrozomu nebo sta- novit fragmentaci DNA ve spermiích. Kombinací těchto metod získáme mnoho informací o kvalitě ejakulátu a na základě výsledků můžeme doporučit andrologickou léčbu pacientům s méně kvalitními spermiemi nebo zvolit nejvhodnější metodu in vitro reprodukce (5, 6). MATERIÁL A METODY Soubor pacientů Vyšetřili jsme 800 mužů z párů s poruchou plod- nosti ve věku 21–66 let léčených v Centrech asis- tované reprodukce GENNET, s. r. o. Ejakulát byl v odběrových místnostech odebrán masturbací do označené sterilní nádobky po doporučené tří až pětidenní pohlavní abstinenci. U všech vzorků byl proveden spermiogram v Laboratoři IVF GENNET Archa nebo Laboratoři IVF GENNET Kostelní, poté následovalo vyšetření průtokovou cytometrií v Imunologické laboratoři GENNET. Metody Spermiogram Vyšetření spermiogramu bylo provedeno podle doporučení WHO 2010. Soubor pacientů zahrnoval 366 normozoospermiků a 434 pacientů s patolo- gickým spermiogramem (tabulka 1). Cytometrické vyšetření Zpracování ejakulátů bylo zahájeno v Imunologické laboratoři zpravidla do jedné hodiny, maximálně do čtyř hodin od odběru. Ke vzorkům byly přidá- ny specifické fluorescenční reagencie a poté byly vzorky změřeny na průtokovém cytometru Navios Beckman Coulter. Hodnocení naměřených dat bylo provedeno softwarem Kaluza, verze 1.5. Stanovení počtu živých a apoptotických spermií Vzorek čerstvého ejakulátu jsme zpracovali podle instrukcí uvedených v soupravě ApoFlowEx ® FITC kit (Exbio Praha, a. s.). Ke značení buněk jsme použili Annexin V – FITC (AN), který se váže na fosfatidylserin na povrchu apoptotických buněk, a propidium jodid (PI), který prostupuje do mrt- vých buněk. Na obrázku č. 1 jsou zřejmé tři základní popula- ce buněk: živé spermie (AN- PI-), časně apoptotické spermie (AN+ PI-), mrtvé a pozdně apoptotické spermie (AN- PI+ a AN+ PI+). Uvedený postup zna- Tab. 1. Přehled vzorků ejakulátu rozdělený podle výsledků spermiogramu a apoptózy spermií. ApoHigh vzorky obsahují >50 % apoptotických spermií v ejakulátu Tab. 1. Samples´ overview of the number of semen samples divided according to the semen analyses results and the number of samples with increased apoptotic sperm frequency (ApoHigh). ApoHigh samples contain more than 50 % of apoptotic sperm Hodnocení spermiogramu Počet Počet a procentuální zastoupení ApoHigh vzorků Normozoospermie 366 62 (16,9 %) Oligozoospermie 89 32 (36,0 %) Asthenozoospermie 120 52 (43,3 %) Oligoteratozoospermie 20 10 (50,0 %) Asthenoteratozoospermie 39 24 (61,5 %) Oligoasthenozoospermie 40 26 (65,0 %) Oligoasthenoteratozoospermie 126 95 (75,3 %) Celkem 800 301 (37,6 %)
Made with FlippingBook
RkJQdWJsaXNoZXIy NDA4Mjc=